Penggunaan Slaid Mikroskop

1. Kaedah smear adalah kaedah pembuatan filem yang menyalut rata bahan pada slaid kaca.

Bahan smear termasuk organisma bersel tunggal, alga kecil, darah, cecair kultur bakteria, tisu longgar haiwan dan tumbuhan, sarang mani, anter, dll.

Apabila mencalit, perhatian harus diberikan kepada: (1) Slaid mestilah bersih. (2) Slaid hendaklah rata. (3) Salutan mestilah seragam. Sapukan titisan ke kanan di tengah-tengah slaid dan sapukan dengan baik dengan pisau pisau bedah atau pencungkil gigi. (4) Salutan hendaklah nipis. Gunakan slaid lain sebagai helaian tolak, tolak perlahan-lahan sepanjang permukaan slaid yang menitis dengan larutan salutan (sudut antara dua slaid hendaklah 30 darjah -45 darjah ) dari kanan ke kiri dan salutkan lapisan nipis yang seragam . (5) Tetap. Jika penetapan diperlukan, ia boleh diperbaiki dengan bahan kimia atau pengeringan (bakteria). (6) Mewarna. Metilena biru untuk bakteria, pewarnaan Reye untuk darah, dan kadangkala wain iodin. Larutan pewarna harus meliputi seluruh permukaan. (7) Bilas. Lap kering atau bakar kering dengan kertas penyerap. (8) Meterai. Meterai gusi Kanada untuk penyimpanan jangka panjang.

2. Kaedah menekan tablet ialah kaedah penyediaan di mana bahan biologi diletakkan di antara slaid kaca dan helaian penutup, dan tekanan tertentu dikenakan untuk menyebarkan sel tisu.

3. Kaedah pemuatan adalah kaedah membuat spesimen slaid dengan menyegel bahan biologi secara keseluruhan, dan pemasangan sementara atau kekal boleh dibuat dengan kaedah ini.

Bahan pemuatan termasuk: organisma mikroskopik seperti alga chlamydomonas, span, amoeba, nematod; hidra, epidermis daun tumbuhan; Sayap serangga, kaki, bahagian mulut, sel epitelium mulut manusia, dsb.

Perhatian harus diberikan kepada penghasilan kaedah pemuatan: (1) Apabila memegang slaid, ia harus diberi perhatian untuk meratakan atau meletakkannya di atas platform. Apabila menitis, jumlah air hendaklah bersesuaian dengan cukup untuk ditutup dengan slip penutup. (2) Bahan hendaklah dibuka dengan jarum membedah atau forsep tanpa bertindih dan diratakan pada satah yang sama. (3) Apabila meletakkan penutup, tutup titisan air secara perlahan dari satu sisi untuk mengelakkan buih. (4) Apabila mengotorkan, setitik cecair pewarna diletakkan pada satu sisi penutup penutup dan ditarik dari sisi yang lain dengan kertas penyerap untuk mewarnakan spesimen di bawah kulit penutup secara sekata. Selepas mewarna, gunakan kaedah yang sama, titiskan setitik air, sedut larutan pewarna, dan amati di bawah mikroskop.

4. Slice ialah spesimen slaid yang diperbuat daripada kepingan nipis yang dipotong daripada organisma hidup.

Bergantung pada keperluan, bahagian bebas boleh dilakukan dengan bilah, atau blok tisu boleh dibenamkan dalam parafin atau collodion atau beku pada suhu rendah dan dihiris dengan mikrotom. Potong ke dalam kepingan 5~10 mikron untuk pemerhatian mikroskop cahaya. Bahagian ultranipis yang dipotong dengan resin epoksi atau blok tisu tertanam asid metakrilik, dengan ketebalan 20~50 nanometer, direka khas untuk pemerhatian di bawah mikroskop elektron. Bahagian yang digunakan untuk pengajaran umum, seperti hujung akar dan batang, biasanya dipanggil bahagian parafin.